植物体内存在潜在抗病性，受到外界损害和病原物侵染的植物可通过激 发子和诱导剂（imiucer)激活植物抗病基因，使植物产生系统抗病性，以免 受到进一步的伤害，这一现象己在许多研究中得到证实。其中，寡聚糖作为 —种新型生物诱抗剂已在许多作物上得到应用，越来越受到人们广泛关注。 寡聚糖种类很多，目前常见的有葡聚寡糖、寡聚半乳糖醛酸、几丁质寡糖和 壳寡糖等可激活植物的防卫系统，提髙植物自身免疫力[14、

活性寡聚糖是一类由3〜10个单糖组成，具有一定结构和生物活性的聚合 体，国际上研究较多的是植物及微生物细胞壁多糖降解的寡糖片断。越来越 多的试验结果表明，植物细胞壁不仅起到防御的结构屏障作用，而且受到病 菌慼染时能起到积极防御反应。一方面，植物细胞壁酶水解病原菌细胞壁中 的P-肽葡聚糖几丁质等，产生活性成分，诱导植物植保素等合成酶系基因表 达；另一方面，病菌入侵植物时，必须水解植物细胞壁的多糖，其降解产物 也能诱导植保素合成。因此，寡聚糖可有效地诱导植物产生防御反应，激活 植物的系统性获得免疫反应。

根据这一理论，由十字花科植物致病菌野油菜黄单孢菌分泌的黄原胶的 寡糖碎片很可能拥有植物的诱抗活性。

实验方法：

大豆子叶法（Soybean Cotyledon Bioassay) [15】：

豆科植物在受到病原体侵染时，能通过莽草酸途径、醋酸-丙二酸途径或 醋酸-甲羟戊酸途径，产生以异黄酮类为主的植保素，直接杀死入侵的病原体， 抑制病斑的:扩大。在外源激发子的处理下豆科植物也能够产生抗性反应，合 成植保素。大豆子叶法就是利用激发子处理大豆子叶，然后通过测定子叶产 生的植保素的量，来表示激发子诱导植物抗性活性的方法。

大豆的培养：大豆种子用水洗净后，用8%次氯酸钠溶液灭菌20min，再 用无菌水冲洗干净，暗光震荡24h。次日将种子播种在铺有蛭石的培养盒中， 置于培养箱中（光照：黑暗=16h: 8h)交替培养10d，待大豆长出两片真叶 后即可进行活性测定。

活性测定方法：

剪下已经长出两片真叶的大豆子叶，用8%次氯酸钠溶液灭菌5min，然 后用无菌水冲洗干净，再用滤纸吸干。在无菌条件下用刀片削去子叶外表皮 厚约1mm，直径约6mm的伤口，用无菌水浸泡清洗，约3〇sec后取出，用 滤纸拭干后放入铺有湿滤纸培养皿中，每皿放10片子叶作为一个处理。每个 样品五个处理，每处理重复两次，对照用水。取配置好的样品溶液（含有 2mg/ml的链霉素）10W加在伤口上。处理后的子叶在25°C黑暗的温箱中培 养24h,将每皿中的子叶转移到一个盛有10ml双蒸水的试管中，充分展荡后 测定0D286〇 结果及讨论：

黄原胶寡糖具有一定的植物诱抗活性，当寡糖浓度为lOOOppm时达最高 值0J3,与对照相比具有显著性的差异。低剂量时壳寡糖的植物诱抗活性要 略髙于黄原胶寡糖（见图4-9, 4-10)。